Teaching

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Genetik

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?bung zur Vorlesung

Mi 09:00-10:00

Do 09:00-11:00

Mi 10:00-11:00

Di 08:15-09:00

Fr 08:15-09:45

Wintersemester

Do 08:30-10:00

Wintersemester

Mo 18:00-19:30

Vorstellung von aktuellen Arbeiten aus dem Bereich Zellzykluskontrolle in Drosophila

Literature Seminar to Lecture 54402

Presentation of selected topics /papers

Experimente zu Entstehung, Nachweis und Reparatur von Mutationen; Erbmusteranalyse; gezielte Deletion eines Gens; DNA-Pr?paration; heterologe Genexpression; PCR-vermittelte Genotypisierung

Detaillierte Angaben im Praktikumsskript zug?nglich in GRIPS

https://elearning.uni-regensburg.de

Mikrobiologie:
N?hrmedien, Anreicherung und Isolierung von Mikroorganismen (Herstellen von Kulturmedien, Sterilisieren im Autoklaven und im Schnellkochtopf, Herstellung von Agarplatten und Bouillonr?hrchen); Isolierung von aeroben Bakterien aus der Luft, Anreicherung von anaeroben Bakterien aus Kartoffeln, Anreicherung photosynthetischer Bakterien aus Teichwasser, Isolierung von Leuchtbakterien;
Grundlagen der Mikroskopiertechnik, einfache F?rbungen (+ Gram F?rbung);
Wachstum von Mikroorganismen (Wachstumskurve mit / ohne Antibiotika); Antibiotika und Desinfektionsmittel (Plattendiffusionstest, Desinfektionstests; Joghurtherstellung; Demonstrationsversuche mit besonderen Archaeen und Bakterien; Physiologisch-, biochemische Tests zur Differenzierung von Bakterien (IMViC- Test; Enterotube, Nachweis von Exoenzymen).

Genetik:
Plasmid-Transformation (Einschleusen von Klonierplasmiden in Zellen von Escherichia coli, Selektionsmethoden, Isolierung von Plasmid-DNA aus Escherichia coli, Behandlung mit Restriktionsenzymen, Agarosegel-Elektrophorese); Regulation des Lactose-Operons (Induktion des Lactose-Operons auf Lactose-haltigen N?hrmedien, Nachweis der Beta-Galactosidase-Aktivit?t), Genotypisierung (Isolierung von DNA aus Zellen der eigenen Mundschleimhaut, Polymerase-Kettenreaktion zur Amplifikation eines spezifischen DNA-L?ngenpolymorphismus, Nachweis der amplifizierten DNA durch Gelelektrophorese); Bakteriophagen (Wachstum von E. coli, Lyse durch den Bakteriophagen Lambda (λ) und Selektion λ-resistenter (λr) Mutanten, Bestimmung der Anzahl von Bakteriophagen-Partikeln in einem Plaque).

Veranstaltung findet immer im Sommer-Semester statt!

Mitarbeit in einem laufenden Forschungsprojekt.

Siehe Webseite der Arbeitsgruppe - Prof. Seufert!

Mitarbeit in einem laufenden Foschungsprojekt zur Zellyzkluskontrolle in Drosophila.

Siehe Webseite der Arbeitsgruppe - Prof. Sprenger!

Participation in a scientific project.

Methods: DNA cloning and mutagenesis, gene expression, Western analysis, co-immunoprecipitation, protein affinity purification, EMSA, Y2H, cell synchronization, flow cytometry, fluorescence microscopy, life cell imaging

Students will participate in an ongoing project on cell cycle control in Drosophila. Typically, this involves overexpression or knock-down (RNAi) of cell cycle control proteins in tissue culture cells or Drosophila embryos and analysis of the cell cycle by flow cytometry or live cell imaging using confocal laser microscopy. Construction of modified DNA-plasmids encoding altered cell cycle proteins for use in the aforementioned experiments will be performed using molecular biology techniques.